Micropagation des Anthurium spp.

Tableau 1.

Milieu MS utilisé fréquemment pour la culture de tissus d’Anthurium et le rapport entre NO3- et NH4+ est de 66:34 à ce milieu. Pour cette raison, le milieu MS généralement modifié est utilisé pour l’organogenèse des Anthurium. Les modifications de la concentration en nitrate d’ammonium ont été étudiées par des chercheurs sur le milieu Anthurium. Hamidah et al. ont utilisé des macroéléments MS demi-forts avec 2,5 mM de nitrate d’ammonium pour les cultures in vitro. Alors que Puchooa a utilisé une concentration réduite de 200 mg/L de nitrate d’ammonium pour la culture de cals, ils ont augmenté la quantité à 720 mg/L pour la régénération. Dufour et Guérin ont utilisé différentes compositions de NO3 et NH4 pour évaluer les résultats du développement. D’après leurs résultats, le rapport de 0,37 a montré une meilleure croissance et un meilleur développement des plantes. Atak et Çelik ont préféré utiliser des sels MS demi-forts avec NH4NO3 abaissé à 250 mg/L pour la régénération des pousses. Winarto et al. ont amélioré un protocole pour l’induction de cals et la régénération des plantes et le milieu NWT-3 contient 750 mg/l de NH4NO3.

Dans les conditions de culture, l’utilisation de produits chimiques synthétiques avec des activités physiologiques similaires aux hormones végétales ont des capacités pour induire la croissance des plantes comme souhaité. L’auxine et les cytokinines sont les hormones les plus importantes qui régulent la croissance et la morphogenèse dans la culture des tissus végétaux. Leur utilisation combinée favorise la croissance des calices, des suspensions cellulaires, le développement des racines et des pousses et a la capacité de réguler la morphogenèse. Il existe des auxines et des cytokinines synthétiques à côté des substances naturelles. Différentes combinaisons et concentrations de régulateurs de croissance végétale tels que l’acide 2,4-dichlorophénoxyacétique, l’acide naphtalène-acétique, la benzylaminopurine et la kinétine ont été utilisées pour indiquer la formation de cals à partir de différents types d’explants de cultivars d’Anthurium. Dans les études préliminaires, l’induction et la régénération des cals, suivies de la régénération des pousses et des racines, sont les principales étapes de la culture tissulaire des plantes entières. En tant que plante commerciale importante, développer un protocole de culture tissulaire rapide et plus efficace pour raccourcir le temps est l’objectif principal de la culture tissulaire d’Anthurium.

Comme indiqué dans le tableau 2, la combinaison de 2,4-D et de BA dans les milieux de culture pour induire l’initiation du cal à partir d’explants de feuilles dans différentes variétés d’Anthurium est fréquemment utilisée. De même, l’ajout de BAP et de 2-iP au milieu de culture des cals a été évalué par différents chercheurs. Les concentrations de 2,4-D utilisées dans le milieu de cals varient entre 0,08 mg/l et 1 mg/l de 2,4-D. Les concentrations de BA varient entre 0. Les concentrations de BA varient entre 0.1 mg/l et 1 mg/l.

Les plantes micropropagées nécessitent un système racinaire développé pour résister aux conditions environnementales extérieures. L’enracinement des pousses a lieu in vitro. Par conséquent, la détermination du type et des niveaux appropriés d’auxine dans les milieux nécessaires pour promouvoir l’enracinement.

Le charbon actif est ajouté au milieu pour promouvoir la croissance des racines . Le CA est composé de carbone et il est souvent utilisé dans la culture de tissus végétaux pour absorber les gaz et les solides dissous. Ce n’est pas un régulateur de croissance mais il a une capacité à modifier la composition du milieu .

Il existe plusieurs utilisations avantageuses du charbon de bois sur le type de culture. Ce sont l’adsorption des composés sécrétés par les tissus cultivés, les diminutions des oxydations phénoliques, les changements de pH du milieu pour optimiser la morphogenèse, la prévention de la croissance indésirable des cals, la simulation des conditions du sol en raison de la capacité à promouvoir la formation de racines, la capacité à utiliser dans la production de produits végétaux secondaires dans des conditions de culture .

L’effet le plus important de l’utilisation de l’AC au milieu est la diminution rigoureuse des concentrations de régulateurs de croissance des plantes et d’autres suppléments organiques. L’AC montre une plus grande capacité d’adsorption des phénols communément produits par les tissus blessés, des hormones végétales comme IAA, NAA, IBA, BA, kinétine, zéatine et d’autres hormones . La propriété adsorptive de l’AC change avec la pureté, le pH et la densité. Les plantules d’Anthurium propagées par Atak et Çelik ont été enracinées dans un milieu contenant de l’AC et données dans la figure 1.

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